INCLUSIÓN Y ACUMULACIÓN DE NA+ EN DIFERENTES ÓRGANOS DE LA VARIEDAD DE TRIGO CUBA-C-204 COMO RESPUESTA AL ESTRÉS SALINO

Autores

  • Leandris Argentel Universidad de Granma, Carretera a Manzanillo, Km 17 ½ Peralejo. Bayamo. Cuba C.P. 85100
  • Jaime Garatuza Payán Instituto Tecnológico de Sonora, 5 de Febrero 818 Sur, Col. Centro, C.P. 85000, Cd. Obregón, Sonora. México
  • Enrico Yépez González Instituto Tecnológico de Sonora, 5 de Febrero 818 Sur, Col. Centro, C.P. 85000, Cd. Obregón, Sonora. México.
  • Jorge González Aguilera Embrapa Trigo Núcleo de Melhoramento e Biotecnologia Genética Molecular e Proteômica Rodovia BR 285, Km 294 Caixa Postal 451 99001-970 Passo Fundo – RS.

DOI:

https://doi.org/10.21206/rbas.v6i2.325

Palavras-chave:

contenido iónico, salinidad, espectrofotometría, microanálisis

Resumo

Se determinó la capacidad de inclusión y los sitios de retención de cationes en una variedad de trigo harinero Cuba-C-204, como posible indicador de toxicidad iónica y daño celular después de tratamiento salino, mediante técnicas de espectrofotometría de absorción atómica, fijación y microanálisis en diferentes órganos de la planta. Plantas fueron cultivadas por 35 días en condiciones de hidroponía en solución nutritiva con dos tratamientos (salinizada y control, con 88 mM de NaCl y sin NaCl, respectivamente). Se cuantificó el contenido catiónico en raíces, vainas y hojas, y en una muestra aleatoria de cada órgano seccionado. Como resultado del tratamiento salino observase que hubo mayor acumulación de Na+ y Ca2+ en los diferentes órganos. En la parte de la raíz más próxima al tallo, y en la base y parte media de la vaina se observó inclusión y concentración significativas de Na+. En la hoja el Na+ se acumuló en la parte más próxima a la lígula y el ápice, estando ausente en la parte media de la hoja. La mayor interferencia nutricional obtenida fue Na+/K+ en las vainas de las hojas, con una relación iónica media de 0.45. El contenido de Ca2+ en todos los casos fue superior en las plantas que crecieron en el medio salino y su concentración aumentó desde la raíz hasta las hojas. Existió congruencia entre los análisis espectrofotométricos y lo observado por microscopía electrónica. Los resultados obtenidos permiten aumentar el conocimiento que se tiene de la variedad como fuente de resistencia al estrés salino.

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Referências

ARGENTEL, L.; GONZÁLEZ, L. M.; AGUILAR, R. L.; FONSECA, I. Efectos de la salinidad en las variables hídricas potenciales hídrico y osmótico y ajuste osmótico en cultivares cubanos de trigo (Triticum aestivum L. y T. durum L.). Cultivos Tropicales, v.34, n.4, p.43-48, 2013.
ARGENTEL, L.; GONZÁLEZ, L. M.; LÓPEZ, R.; FONSECA, I.; GIRÓN, R. Efecto de la salinidad sobre la fenología, los componentes del rendimiento y su relación con la tolerancia varietal (Triticum aestivum L. y T. durum L.). Cultivos Tropicales, v.29, n.3, p.53-57, 2008.
ARGENTEL, L.; LÓPEZ. R. D.; GONZÁLEZ, L. M.; ORTEGA, E.; RODÉS, R.; FERNÁNDEZ, Y. Actividad de la enzima ribulosa 1,5-bifosfato carboxilasa/oxigenasa en variedades de trigo en condiciones de salinidad. Centro Agrícola, v.41, n.3, p.85-91, 2014.
BENDERRADJI, L.; BRINI, F.; AMAR, S. B.; KELLOU, K.; AZAZA, J.; MASMOUDI, K.; BOUZERZOUR, H.; HANIN, M. Sodium transport in the seedlings of two bread wheat (Triticum aestivum L.) genotypes showing contrasting salt stress tolerance. Australian Journal of Crop Science, v.5, n.3, p.233–241, 2011.
BYRT, C. S.; XU, B.; KRISHNAN, M.; LIGHTFOOT, D. J.; ATHMAN, A.; JACOBS, A. K.; WATSON-HAIGH, N. S.; PLETT, D.; MUNNS, R.; TESTER, M.; GILLIHAM, M. The Na+ transporter, TaHKT1; 5?D, limits shoot Na+ accumulation in bread wheat. The Plant Journal, v. 80, n.3, p.516-526, 2014.
CORNACCHIONE, M. V.; SUAREZ, D. L. Emergence, forage production, and ion relations of alfalfa in response to saline waters. Crop Science, v.55, n.1, p.444-457, 2015.
DEÁK, C.; JÄGER, K.; FÁBIÁN, A.; NAGY, V.; ALBERT, Z.; MISKÓ, A.; BARNABÁS, B.; PAPP, I. Investigation of physiological responses and leaf morphological traits of wheat genotypes with contrasting drought stress tolerance. Acta Biologica Szegediensis, v.55, n.1, p.69–71, 2011.
FEKI, K.; BRINI, F.; AMAR, S. B.; SAIBI, W.; MASMOUDI K. Comparative functional analysis of two wheat Na+/H+ antiporter SOS1 promoters in Arabidopsis thaliana under various stress conditions. J. Appl. Genetics, v.56, n.1, p.15-26, 2015.
HAMAMOTO, S.; HORIE, T.; HAUSER, F.; DEINLEIN, U.; SCHROEDER, J. I.; UOZUMI, N. HKT transporters mediate salt stress resistance in plants: from structure and function to the field. Current opinion in biotechnology, v.32, p.113-120, 2015.
HAUSER, F.; HORIE, T.A conserved primary salt tolerance mechanism mediated by HKT transporters: a mechanism for sodium exclusion and maintenance of high K+/Na+ ratio in leaves during salinity stress. Plant Cell Environment, v.33, n.4, p.552-565, 2010.
HOAGLAND, D. R.; ARNON, D. I. The water-culture for growing plants without soil. California: California Agricultural Experiment Stattion, Circ. 347, 1950, 32p.
HONGBO, S.; ZONGSUO, L.; MINGN, S. Osmotic regulation of 10 wheat (Triticum aestivum L.) genotypes at soil water deficits. Colloids and Surf. Biointerfaces, v.47, n.2, p.132-139, 2006.
IQBAL, M.; ASHRAF, M. Gibberellic acid mediated induction of salt tolerance in wheat plants: growth, ionic partitioning, photosynthesis, yield and hormonal homeostasis. Environmental and Experimental Botany, v.86, p.76-85, 2013.
JACOBY, R. P.; TAYLOR, N. L.; MILLAR, A. H. The role of mitochondrial respiration in salinity tolerance. Trends in plant science, v.16, n.11, p.614-623, 2011.
JAMES, R. A.; BLAKE, C.; BYRT, C. S.; MUNNS, R. Major genes for Na+ exclusion, Nax1 and Nax2 (wheat HKT1; 4 and HKT1; 5), decrease Na+ accumulation in bread wheat leaves under saline and waterlogged conditions. Journal of experimental botany, v.62, n.8, p.2939-2947, 2011.
KARIMI, G.; GHORBANLI, M.; HEIDARI, H.; KHAVARI NEJAD, R. A.; ASSAREH, M. H. The effects of NaCl on growth, water relations, osmolytes and ion content in Kochia prostrata. Biologia Plantarum, v.49, n.2, p.301-304, 2005.
KASUKABE, Y.; HE, L.; NADA, K.; MISAWA, S.; IHARA, I.; TACHIBANA, S. Overexpression of Spermidine Synthase Enhances Tolerance to Multiple Environmental Stresses and Up-Regulates the Expression of Various Stress-Regulated Genes in Transgenic Arabidopsis thaliana. Plant Cell Physiol, v.45, p.712-722, 2004.
KIANI -POULLA, A.; RASOULI, F. The potencitial of leaf cholophyll content tos creen bread- wheat genotypes in saline condition. Photosintetic, v.52, n.2, p.288-300, 2014.
MUNNS, R.; GILLIHAM, M. Salinity tolerance of crops – what is the cost?. New Phytol, v.208, n.3, p.668-673, 2015.
MUNNS, R.; JAMES, R.A.; LÄUCHLI, A. Approaches to increasing salt tolerance of wheat and others cereals. Journal of Experimental Botany, v.57, n.5, p.1025-1043, 2006.
MUNNS, R.; JAMES, R. A.; XU, B.; ATHMAN, A.; CONN, S. J.; JORDANS, C.; GILLIHAM, M. Wheat grain yield on saline soils is improved by an ancestral Na+ transporter gene. Nature biotechnology, v.30, n.4, p.360-364, 2012.
NGUYEN, V. L.; RIBOT, S. A.; DOLSTRA, O.; NIKS, R. E.; VISSER, R. G.; VAN DER LINDEN, C. G. Identification of quantitative trait loci for ion homeostasis and salt tolerance in barley (Hordeum vulgare L.). Molecular Breeding, v.31, n.1, p.137-152, 2013.
RAMEZANI, A.; NIAZI, A.; ABOLIMOGHADAM, A. A.; BABGOHARI, M. Z.; DEIHIMI, T.; EBRAHIMI, M.; EBRAHIMIE, E. Quantitative expression analysis of TaSOS1 and TaSOS4 genes in cultivated and wild wheat plants under salt stress. Molecular biotechnology, v.53, n.2, p.189-197, 2013.
SHI, G. L.; ZHU, S.; MENG, J. R.; QIAN, M.; YANG, N.; LOU, L. Q.; CAI, Q. S. Variation in arsenic accumulation and translocation among wheat cultivars: The relationship between arsenic accumulation, efflux by wheat roots and arsenate tolerance of wheat seedlings. Journal of hazardous materials, v.30, n.289, p.190-196, 2015.
TUBEROSA, R.; MACCAFERRI, M.; COLALONGO, C. Molecular Breeding for a Changing Climate: Bridging Ecophysiology. In: Crop stress management and global climate change, CABI Climate Change Series, 2011, v.2, p.122-171.
UEHLEIN N.; LOVISOLO C.; SIEFRITZ F.; KALDENHOFF R. The tobacco aquaporin NtAQP1 is a membrane CO2 pore with physiological functions. Nature, v.425, p.734-737, 2009.

Publicado

2016-06-30

Como Citar

Argentel, L., Garatuza Payán, J., González, E. Y., & González Aguilera, J. (2016). INCLUSIÓN Y ACUMULACIÓN DE NA+ EN DIFERENTES ÓRGANOS DE LA VARIEDAD DE TRIGO CUBA-C-204 COMO RESPUESTA AL ESTRÉS SALINO. Revista Brasileira De Agropecuária Sustentável, 6(2). https://doi.org/10.21206/rbas.v6i2.325

Edição

Seção

Artigos